Помощь по Теле2, тарифы, вопросы

Кто из вас не имел такого опыта: местный или общий наркоз, чтобы необходимые вам процедуры не причиняли боль? Вы бы предпочли, чтобы с вами проделывали такие манипуляции вообще без наркоза? Я очень в этом сомневаюсь! Наркоз - это одно из наиболее важных достижений современной медицины!
Однако многие люди не любят «терять контроль» над ситуацией, поэтому избегают общего наркоза. Другие боятся того, что они не «проснутся» после общего наркоза или, что во время операции хирурги допустят ошибку, которая приведет к новым проблемам или опять к смерти.

К счастью, в наши дни с улучшенными анестетиками, более компетентным персоналом (анестезиологами, хирургами и т.п.), с «умными» приборами и т.п. наркоз и операции стали более безопасными, чем раньше.

Как и в любом аспекте ухода за вашим питомцем, чем больше вы знаете о наркозе и об операции, тем правильней будет решение, которое вы примите. Наркоз - это «самая страшная» тема для большинства владельцев кроликов. Причиной тому служат дезинформация, мифы и иногда неудачный предыдущий опыт. Но если не разрешить наркоз, будет невозможно провести многие необходимые операции, а также определенную диагностику.

В этой статье мы хотим рассказать вам о том, что происходит с вашим кроликом во время операции, мы постараемся помочь вам принять правильное решение. Мифы о кроликах Кролики слабые животные - За последние 25 лет практики с кроликами мы поняли, что кролики могут переносить большинство медицинских процедур так же успешно, как и любые другие млекопитающие. Этот миф идет, главным образом, оттого, что в прошлом владельцы не могли заметить за своим питомцем недомогание до тех пор, пока состояние животного не становилось критичным. Когда же люди обращались к ветеринару, было уже слишком поздно. В дополнение, медикаменты и сами методы лечения, применяемые к кроликам в прошлом, не всегда были совершенны (из-за недостатка знаний ветеринаров в области лечения кроликов).

За последние 15 лет успешное лечение и статистика выживаемости кроликов значительно возросли - это следствие того, что владельцы кроликов стали более образованы в вопросе ранней диагностики недугов у своих питомцев, а так же, как говорилось выше, усовершенствовались методы лечения животных. Высокий риск наркоза и операции - Мы не считаем, что наркоз или операция для кроликов более рискованны, чем для других животных. Единственное исключение - кролики хуже переносят операции на желудочно-кишечном тракте, которые будут обсуждаться ниже.

Миф о высоком риске наркоза и операций идет из прошлого, когда анестетики, применяемые в ветеринарии, были не так безопасны, как современные.

Эффект сильного или длительного стресса

Главная причина, по которой должна применяться анестезия - это обезболивание. Боль может быть очень сильным стрессовым фактором для кролика. Изучение кроликов показало, что может произойти с кроликом из-за сильного или длительного стресса - падение температуры тела, падение кровяного давления, поражение почек, потеря аппетита, язва желудка, кардиомиопатия, желудочно-кишечный стаз и смерть.

Анестезия может избавить вашего кролика от таких проблем, сняв боль, которая является стрессом.

Наркоз и седативные препараты

Наркоз достигается, когда в какой-либо части тела или во всем теле пропадает чувствительность. Общий наркоз вводит пациента в абсолютно бессознательное состояние.
Седативные препараты похожи на общий наркоз, но пациент остается на половину в сознании. Наркоз и седативные препараты применяются в ветеринарии в различных ситуациях (рентген, внутривенные процедуры, биопсии и т.п.). А так же они используются для успокоения агрессивных или испытывающий сильнейшую боль животных, а так же для проверки области носоглотки и операций.
Типы наркоза Местный наркоз - применяется для выключения болевой чувствительности на определенном участке тела. Кролик остается в сознании. Местная анестезия может применяться при операциях на коже или биопсии, при установке внутривенных и прочих катетеров или для проведения офтальмологических процедур (промывание слезного канала и др.).
Региональная анестезия - лишаются чувствительности более обширные и глубокие районы. Анестетик вводится, например, в спинномозговую жидкость, приводя к тому, что чувствительности лишается вся часть тела кролика ниже места, куда сделана инъекция. Анестетик так же может быть введен в область прохождения конкретного нерва (проводниковая анестезия), тогда будет «заморожен» весь район, с которым связан этот нерв. Кролик остается полностью в сознании. Этот тип анестезии успешно используется в кроличьей ветеринарии.
Общий наркоз - анестетик циркулирует по кровеносной системе, в том числе проникает в головной мозг, приводя к тому, что кролик полностью лишается сознания. Есть два метода подачи общего наркоза: инъекционный и ингаляция. Инъекционные анестетики вводятся внутримышечно (в/м), внутрибрюшинно или подкожно (п/к). Инъекционные анестетики часто используются для проведения непродолжительных процедур (особенно в полости рта) или используются в качестве комбинированного наркоза с последующим применением газообразных препаратов. В этом случае они применяются для успокоения кролика, чтобы можно было максимально аккуратно произвести интубацию кролика (в дыхательные пути кролика вставляется трубка, посредством которой подается газообразный наркоз).
Самый большой недостаток инъекционного наркоза - это сложность расчета дозировки, которая индивидуальна для каждого кролика. Так же невозможно контролировать дозу, когда она была уже введена (исключение обратимые препараты). Инъекционные анестетики (без каких-либо дополнительных средств) не могут применяться для длительных операций. Длительность действия наркоза зависит от используемого препарата. Ко всему прочему, некоторые виды инъекционного наркоза приводят к кардиологическим нарушениям и к поражению почек. На данный момент наиболее часто применяются такие средства как: кетамин, реланиум (валиум), буторфанол, пропофол, медетомидин, опиаты.
Газообразные анестетики - лучший выбор для проведения большинства операций. Как упоминалось выше, прежде чем применять газообразный анестетик, необходимо провести премедикацию, чтобы животное не сопротивлялось. Газообразный наркоз подается по средствам маски или интубации. Пациент, получающий газообразные анестетик, подключен к аппарату, который подает анестетик в поток кислорода. Преимущество газообразного анестетика заключается в том, что концентрация анестетика может быстро регулироваться, так как пациент все время подключен к кислороду. Выход из такого наркоза обычно быстрый и мягкий. В дополнение: изофлуран наиболее распространенный газообразный анестетик, безопасен для кроликов с различными видами заболеваний, а так же он безопасен и для медицинского персонала. Метоксифлуран и галотан, широко применяемые к кроликам в прошлом, достаточно опасны для врачей, работающих в этими видами наркоза. К тому же, метоксифлуран опасен для ожиревших кроликов.
Риск общего наркоза Если проводить аккуратную подготовку и мониторинг пациента, риск общего наркоза снижается до минимума. Однако было бы неправдой, если бы мы сказали, что риска нет вообще. Медицина - это не точная наука, потому что мы имеет дело со сложными и индивидуальными организмами. Осложнения при общем наркозе происходят из-за остановки дыхания, сердцебиения, гипоксии мозга приводящие к смерти. В опытных руках, смерть от анестезии - редкость. Самые распространенные причины смерти от наркоза это - остановка сердца или дыхания, возникающие часто на фоне гипотермии (пониженная температура тела), гиповолемии (снижения давления в кровяном русле), эмболии (закупорка кровеносных сосудов). Остановка дыхания или сердца может быть следствием множества факторов, включающих заболевания в грудной полости (включая сердце или легкие), другие системные заболевания (особенно поражающие печень и/или почки, посредством которых анестетик выводится из организма), закупорка подающей воздух трубки (содержимым желудка, кровью) или передозировка анестетика.
Некоторое понижение температуры является естественным при общем наркозе, так как под наркозом замедляются обменные процессы. Каждый, кто когда-либо находился под общим наркозом, наверное, помнит, как после пробуждения вас трясло от холода. Температура кролика может очень быстро понизиться до критического уровня, особенно если вскрыта брюшная полость или операция проходит продолжительное время. Гиповолемия случается, когда пациент теряет критический объем крови или других жидкостей из тела во время операции, а так же если уровень гидратации перед операцией был не откорректирован.
Эмболия случается, к счастью, редко, но может произойти в любой момент, особенно если операция затрагивает большие кровеносные сосуды, костную ткань или если кролик имел до операции серьезную бактериальную или грибковую инфекцию.

Факторы, снижающие риск общего наркоза

К счастью, существует много вещей, которые могут быть сделаны, чтобы снизить риск наркоза. Факторы, увеличивающие риск: отсутствие предоперационного исследования животного, заболевания (особенно респираторные, сердечные, почечные или печеночные, дегидратация или ожирение), неподходящий анестетик или неправильная доза, отсутствие мониторинга во время операции или отсутствие адекватного постоперационного наблюдения за животным и соответствующего ухода.
Вот некоторые вещи, которые ветеринарный персонал может сделать, чтобы снизить риск анестезии и операции:
-провести предоперационного исследование животного, включая диагностику
-стабилизировать/вылечить сопутствующие заболевания
-использовать, подходящий для кроликов, анестетик и правильно рассчитать дозировку (необходимо узнать точный вес животного)
-постоянно наблюдать за состоянием животного во время наркоза/операции
-пристально следить за животным после операции, пока оно не проснется и не начнет двигаться

Лечение существующих заболеваний
Очень важно стабилизировать или вылечить любые заболевания, существующие на момент физического исследования кролика, такие как: дегидратация, инфекции, заболевания печени или почек, сердца или легких. Самая распространенная ситуация, осложняющая принятие окончательного решения в пользу операции - это ожирение кролика. Ожиревшие кролики всегда подвергаются большему риску, идя на операцию, причина - возможное заболевание печени (ожиревшая печень, липидоз) и респираторные проблемы - давление лишнего жира на грудную клетку.
Если нет жизненно опасной ситуации, которая требует немедленной операции, ожиревший кролик должен сбросить вес перед операцией, требующей общей анестезии.
*Важно: Нужно обратить внимание, что некоторые заболевания, протекающие у кролика на момент операции, могут остаться незамеченными. Как говорилось выше, мы имеем дело со сложными организмами, и не все тесты смогут обнаружить болезнь у кролика. Однако такие ситуации, когда после прохождения полного обследования болезнь остается незамеченной, редки.

Введение анестетика
Из-за самой природы кролика, из-за специфического устройства его желудочно-кишечного тракта и факта, что кролика не может стошнить, нет необходимости лишать кролика пищи перед операцией. Некоторые ветеринары предпочитают убрать пищу за пару часов перед операцией, чтобы убедиться, что рот кролика очищен от пищи. Техника проведения операции под общим наркозом Когда ваш кролик теряет сознание (действие общего наркоза или частичная потеря активности под действием премедикации), его помещают на теплую подушечку, чтобы избежать переохлаждения тела. В некоторых случаях может понадобится дополнительный источник тепла). Если еще не была введена, подающая наркоз трубка, именно сейчас она будет установлена. Если внутривенный катетер не был поставлен до этого, его поставят сейчас, когда кролик без сознания или обездвижен. Исключая короткие процедуры здоровым животным (зубные манипуляции и проч.), рекомендуется иметь поставленный внутривенный катетер, чтобы в экстренной ситуации можно было быстро и легко подать кролику необходимые медикаменты или физ. растворы.
Большинство кроликов, переносящих длительные операции, должны получать внутривенно растворы, чтобы избежать дегидратации и компенсировать потерю крови. Желательно, чтобы растворы были подогреты, чтобы они помогли поддержать нормальную температуру тела животного. Мониторинг животного во время операции Есть несколько показателей, за которыми необходимо следить во время наркоза и операции. Дыхание - дыхание может отслеживаться визуально, обычно за ним следит ассистент хирурга. Так же можно использовать стетоскоп. Частота сердцебиения/пульс - частота сердцебиения может быть отслежена с помощью стетоскопа, аппарата ЭКГ или пульсоксиметра. Температура тела - температура тела измеряется с помощью термометра (ректально). Рефлексы - проверка реакции кролика на определенные физические действия поможет определить глубину наркоза. Существует несколько методов подобной проверки, но самый распространенный метод - прикосновение к глазу животного. Если врач прикасается к ступне кролика, а животное пытается отвести лапу в сторону, если врач трогает веко кролика, а кролик пытается моргнуть, это говорит о том, что животное все еще может чувствовать боль (тогда анестетик будет добавлен).

Постоперационный уход
Когда процедуры закончены, кролик встает на путь выздоровления. Подача аэрозольной анестезии будет прекращена, а кислород будет подаваться еще несколько минут перед тем, как отключить кролика от аппарата. Трубка будет убрана, когда кролик начнет демонстрировать симптомы пробуждения. Рефлексы будут снова проверены. Вашего кролика, скорее всего, перенесут из операционной в другое помещение, которое должно быть достаточно тихим, но где есть персонал, который будет наблюдать за животным. Количество тепла, которое понадобится кролику после операции, зависит от температуры его тела в конце процедур. Большинству кроликов понадобится лишь короткое время искусственного обогрева. Дыхание и пульс будут все еще проверятся, пока ваш кролик окончательно не проснется.

Анальгезия
Не смотря на то, что темой данной статьи является наркоз и операция, мы не можем оставить без внимания этот важный аспект постоперационного ухода. Как упоминалось выше, обезболивание может избавить кролика от серьезного, опасного для жизни, стресса. Много лет назад, когда мы еще не понимали, насколько важна анальгезия, мы теряли кроликов в течение 36 часов после операции. Операции проходили успешно, но боль убивала кроликов. Испытывающий боль кролик медленнее идет на поправку, поэтому совершенно необходимо проводить обезболивание после большинства операций. Самые распространенные анальгетики, успешно применяемые к кроликам, это: буторфанол, бупренорфон и нестероидные противовоспалительные препараты (НПВП) такие, как аспирин, карпрофен (римадин), диклофенак, флуниксил, ибупрофен, индометацин, кетопрофен, мелоксикам, ацетоминофен, пироксикам. Альтернативный источник анальгезии для кроликов, хронически испытывающих боль, это - акупунктура. Поведение кроликов после наркоза и операции Спокойное поведение - Ваш кролик может постоянно хотеть спать и остается тихим. Недостаток активности может быть следствием оставшегося в крови анестетика, боли или других медикаментов. Некоторые обезболивающие препараты обладают седативным свойством и могут быть причиной вялости животного. Если ваш кролик остается в таком состоянии продолжительное время, сидит, нахохлившись, не может нормально двигаться, вам необходимо связаться с вашим ветеринаром.
Плохой аппетит - Ваш кролик может полностью отказываться от пищи и воды все первые 24 часа после возвращения домой.
Анальгетики могут улучшить ситуацию, но не повлияют коренным образом. Вы можете покормить вашего питомца насильно (из шприца) смесью из овощного пюре и фруктового сока один - два раза в течение этих 24 часов. Если по истечении этого срока кролик все еще отказывается есть, немедленно свяжитесь с вашим ветеринаром. Ненормальный стул или отсутствие стула - Анестетики и анальгетики могут ослабить перестальтику кишечника вашего кролика. Кроме того, ваш кролик мог мало поесть перед операцией. В первые три дня стул может отсутствовать или появляться нерегулярно, шарики могут быть меньше и мягче, чем обычно. Все эти проблемы должны пройти в течение трех дней.
Жидкий стул (диарея)- причина для беспокойства. Если вы наблюдаете, такое расстройство, свяжитесь со своим ветеринаром. Вопросы, которые вы должны задать своему ветеринару Уровень подготовки - спросите вашего ветеринара о том, как часто ему приходилось работать с кроликами. Возможно, что у него не будет такого уж большого опыта работы с этими животными, и зависит от вас, позволить ему проводить операцию или нет. Но если у ветеринара был хоть какой-то удачный опыт операций на кроликах, если вы наблюдаете желание врача работать с вашим животным, если он вразумительно ответит на все, волнующие вас, вопросы - почему бы и нет?! Тип анестезии, которую собирается применять врач - вы уже знакомы с названиями самых распространенных анестетиков, применяемых к кроликам, и если ваш врач собирается применить другой препарат, поинтересуйтесь, на чем основано его решение и какой опыт в применении этого препарата был у конкретного врача.
Попросите ветеринара рассказать вам о том, как будет проводиться операция, будет ли использована премедикация, как будет осуществляться мониторинг состояния животного во время и после операции, какие анальгетики будут использоваться по окончании процедур.

Самые распространенные операции на кроликах

Стерилизация - Это полное удаление матки и яичников у самки. Стерилизация проводится, чтобы избежать нежелательных беременностей, рака матки и для улучшения поведения животного (искоренения «вредных привычек» крольчихи). Эту операцию можно проводить с четырех месяцев и до двух лет. Риск раковых заболеваний репродуктивных органов сильно возрастает после двух лет.
Кастрация - это полное удаление яичек самца. Существует несколько методик проведения данной операции. Кастрация производится для контроля рождаемости и коррекции поведения. Кастрация так же помогает избежать рака яичек, хотя рак репродуктивных органов чаще встречается у самок.
Зубные процедуры - зубные заболевания часто встречаются у кроликов, причиной может быть неправильная диета, генетические нарушения или травма. В некоторых ситуациях зубы кролика должны быть полностью удалены. Зубные операции трудны в первую очередь потому, что ротовая полость кроликов очень маленькая, в ней очень трудно разглядеть все зубы. А так же корни зубов кроликов очень длинные. Всегда лучше проводить зубные операции своевременно, когда проблема только заявляет о себе, чтобы избежать дальнейших осложнений.
Удаление абсцессов - Абсцессы могут появиться в любой части тела кролика, но чаще всего, появляются на голове. Большинство абсцессов на голове являются следствием зубных заболеваний. Если это возможно, абсцесс нужно полностью удалить.
Операции на желудочно-кишечном тракте - Такие операции часто производятся, чтобы убрать закупорку в желудочно-кишечном тракте. Блокада может произойти в любой части тракта, и может быть следствием скопления сухого содержимого желудка, ковровых нитей, пластика, резины и т.п. Такие операции у кроликов очень рискованны из-за двух факторов:
1. Обычно кролик уже находится в глубоком шоке из-за произошедшей закупорки.
2. Желудочно-кишечный тракт кроликов - очень нежная система. Желудочно-кишечный тракт (в частности слепая кишка) может плохо функционировать после операции. После подобных операций очень часто наблюдаются спайки из-за слипчивого воспаления в кишечнике, а также часто нарушается механическая работа кишечника и снова происходит закупорка. Таким пациентам требуется повышенное внимание персонала и самый внимательный мониторинг. Первые три дня после операции - критичны, и кролик должен находить в клинике под постоянным наблюдением специалистов.
Однако благополучный исход операций на желудочно-кишечном тракте - редкость. Другие операции - Операции могут проводиться на любых органах кроликов, как и у всех других млекопитающих.
Другие распространенные операции, проводимые кроликам, это: цистотомия (вскрытие мочевого пузыря, обычно чтобы удалить опухоль или камни), ортопедические операции, удаление опухолей. Ваш ветеринар может дать вам больше информации об этих операциях.

УДК 619:617-089.5:636.92
Статья: "Условия, необходимые для успешной анестезии кроликов"
Successful management of rabbit anesthesia

О.Н. Мелентьев кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры болезней птиц, рыб, пчел и пушных зверей. ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины».

Факторы, влияющие на риск анестезии у кроликов

Существует много факторов, влияющих на риск анестезии , наиболее существенными являются стресс, гипоксия, предшествующие болезни. Клинический осмотр перед анестезией дает представление об общем состоянии кролика. Взвешивание необходимо для точного расчета доз используемых препаратов. , корректный подсчет доз и наблюдение за ходом анестезии делают ее безопаснее.

There are many problems associated with rabbit anesthesia: stress, hypoxia and preexisting diseases. Clinical examination prior to anesthesia gives an idea of the general health status of the rabbit. An accurate weight is required to calculate the dosages of drugs that are to be used. Good anesthetic equipment, the correct range of drugs and an observant anesthetist improve anesthetic safety.

За десятилетия использования кроликов в качестве лабораторных животных и развития ветеринарной медицины кроликов, содержащихся как домашние питомцы, были предприняты попытки использования большинства препаратов, применяемых в медицинской и ветеринарной анестезиологии . Накопленный опыт свидетельствует, что многие средства применяемые для седации, анестезии и анальгезии, но эффективные и безопасные дозы препаратов, их фармакодинамика у этих животных, применение комбинаций препаратов, имеет значительные особенности .

Анестезия обоснованно воспринимается и владельцами как высоко рискованная процедура, хотя некоторые имеющиеся в настоящее время препараты можно использовать достаточно безопасно . Исследования смертности собак, кошек и кроликов, связанной с анестезией и седацией, опубликованные Brodbelt DC. at al. в 2008 году, показали, что средняя смертность собак составляет 0,17%, кошек 0,24%, а кроликов 1,39% . При разработке анестезиологического протокола необходимо учитывать значительные биологические особенности этих животных, что позволит уменьшить риск.

Существует много факторов, влияющих на риск анестезии, наиболее существенными являются стресс, гипоксия, предшествующие болезни. Часто несколько перечисленных факторов присутствуют у одного кролика. Громкие звуки, незнакомая обстановка, запах других животных также оказывают влияние .

Интубирование кролика

Интубирование трудно из-за анатомических особенностей ротовой полости, носоглотки и трахеи. Из-за малого объема грудной клетки у кроликов часто развивается гипоксия. Дыхательный объем составляет только 4-6 мл/кг и легкие имеют небольшой объем по сравнению с органами брюшной полости. Вдох и выдох осуществляются преимущественно за счет движений диафрагмы, а не за счет межреберных мышц. Такое положение кролика во время анестезии, когда органы брюшной полости давят на диафрагму, может препятствовать дыхательным движениям .

Даже внешне здоровые они могут быть скрытыми носителями таких заразных болезней как пастереллез и энцефалитозооноз. Поражение легких, вызванное в первую очередь Pasteurella multocida, может затруднить газообмен в альвеолах. Поражения почек и головного мозга, вызванные энцефалитозоонозом, могут привести к другим осложнениям.

Кроме того, если кролик перед газовой анестезией не был успокоен, он, почувствовав запах газа, задерживает дыхание, возникает апноэ в сочетании с брадикардией и гиперкапнией. В исследовании Flecknell et al. (1996), период апноэ длился от 30 секунд до 2 минут при использовании изофлюрана и галотана через лицевую маску и в индукционной камере . Некоторые анестетики (медетомидин/кетамин) вызывают падение артериального давления и оксигенации, увеличивая риск гипоксии .

Болезни зубов и нарушение работы кишечника вызывают истощение и слабость, усиленное слюнотечение может привести к обезвоживанию и нарушению баланса электролитов. Ожиревшие кролики склонны к развитию гипертензии и кардиальной гипертрофии. Гиперинсулинемия, гипергликемия и увеличение уровня триглицеридов часто встречаются в сыворотке крови ожиревших кроликов, и липидоз печени у них развивается быстро, после короткого периода без корма, особенно если у кролика сильный стресс.

Ожиревшие кролики - самые трудные пациенты для хирургических операций . Освобождение эндогенных катехоламинов в результате стресса и боли может быть причиной сердечной аритмии. Кролики чрезвычайно чувствительны к боли, особенно после операций на брюшной полости и удаления резцов. Боль является особенно сильным стрессором, она приводит к уменьшению аппетита, замедлению моторики кишечника, может вызвать кишечный стаз и, в конечном итоге, смертельный липидоз печени. Врожденные пороки сердца, такие как дефект межжелудочковой перегородки, приводят к кардиомиопатии, особенно у кроликов гигантских пород .

Клинический осмотр перед анестезией

Клинический осмотр перед анестезией дает представление об общем состоянии кролика. Некоторые ослабленные кролики нуждаются в поступлении питательных веществ перед анестезией. Дегидратированные, в состоянии шока или гипотензии пациенты нуждаются во внутривенном или внутрикостном введении жидкостей. У кроликов не бывает рвоты , таким образом, в выдержке без корма необходимости нет, хотя короткий период в 1-2 часа позволяет быть уверенным, что в ротовой полости нет кормовых частиц, и желудок не переполнен.

Взвешивание необходимо для точного расчета доз используемых препаратов. Количество корма в желудочно-кишечном тракте изменяется в разное время дня и может повлиять на результаты взвешивания. Кролики могут иметь значительное количество корма в пищеварительном тракте, особенно в слепой кишке. Жирные животные нуждаются в меньших дозах препаратов, чем тощие, поэтому некоторые авторы рекомендуют рассчитывать дозы исходя из уровня метаболизма, зависящего от массы тела .

Во время анестезии опасность гипоксии можно снизить, если положить его таким образом, чтобы органы брюшной полости не давили на диафрагму. Вытягивание шеи и извлечение языка из ротовой полости не только позволяет следить за цветом слизистой оболочки, но также убирает основание языка из глотки и открывает дыхательные пути.

Дыхательные движения осуществляются в большей степени за счет движений диафрагмы, и визуальный подсчет может быть затруднен, хирургические поля также затрудняют наблюдение за дыханием. Во всех случаях предпочтительнее использовать монитор состояния пациента.

При анестезии они нуждаются в постоянном поступлении кислорода. Оксигенация перед анестезией снижает риск возникновения гипоксии, если кролик задерживает дыхание. Кислород можно давать через лицевую маску (Фото. 1), эндотрахеальную или назальную трубку или даже через трубку, вставленную в глотку через рот.

Сбалансированная анестезия

Как и у животных других видов, только сбалансированная анестезия позволяет успешно провести хирургическую операцию. Слишком легкая анестезия приводит к пробуждению животного во время операции при сильном раздражении тканей и проявляется движением животного или даже криками, у такого пациента может развиться гипоксия и цианоз. Реакция анестезиолога на длительную задержку дыхания - снижение концентрации анестетика - может привести к слишком легкому наркозу и появлению чувствительности. Увеличение концентрации газа необходимо для углубления наркоза. Если кролик не интубирован, запах газа вызывает задержку дыхания и поступление газа прекращается, достижение хирургического наркоза затрудняется. Медленное увеличение концентрации газа после эффективной премедикации предотвращает задержку дыхания при использовании лицевой маски.

Эндотрахеальная интубация

Эндотрахеальная интубация (фото. 2) предотвращает появление проблем связанных с задержкой дыхания, позволяет вводить кислород и значительно снижает смертность. Эндотрахеальная интубация позволят также в случае необходимости проводить искусственную вентиляцию легких. Хорошее содержание после операции и адекватная анальгезия необходимы для уменьшения боли и стресса, восстановления аппетита и предотвращения развития липидоза печени.

Прозрачная лицевая маска позволяет наблюдать за цветом слизистых оболочек. Необходимо иметь набор маленьких эндотрахеальных трубок (2,0-5,0 мм). Кролики имеют маленький дыхательный объем (4-6 мл/кг) и анестетик циркулирует в маленьком объеме. Хотя роторасширители использовать необязательно, они позволяют лучше следить за состоянием ротовой полости и гортани. Ларингоскоп с маленьким клинком (0 или 1) можно использовать для визуализации гортани и облегчения интубации.

Пульсоксиметр

Как часть анестезиологического оборудования можно использовать пульсоксиметр (фото. 3), лучшим местом для его прикрепления является язык, но это невозможно, если для анестезии используется лицевая маска. Удовлетворительный сигнал можно получить с паховых складок или с основания хвоста, если выщипать волосы и размещение сенсора возможно, также можно использовать ректальный зонд.

Возможность использования дыхательного монитора зависит от размеров кролика. Электрокардиограф можно использовать как сердечный монитор. Ректальную температуру можно определять стандартным или цифровым термометром с дистанционным датчиком. Датчик должен быть смазан и осторожно введен в прямую кишку для постоянного контроля ректальной температуры весь период анестезии.

Таким образом, хорошее оборудование для анестезии, корректный подсчет доз и наблюдение за ходом анестезии кроликов делают ее безопаснее. и применяемых препаратов зависит от общего состояния пациента, характера и планируемой продолжительности операции, возможностями клиники и владельца, при этом важную роль играет практический .

ЛИТЕРАТУРА

1. Пламб, Дональд К. Фармакологические препараты в ветеринарной медицине // М., 2002.- 856 с.
2. Aeschbacher, G. Rabbit anesthesia // Compendium on Continuing Education, 1995, 17, 1003-1011
3. Brodbelt DC, Blissitt KJ, Hammond RA, Neath PJ, Young LE, Pfeiffer DU, Wood JL. // The risk of death: the confidential enquiry into perioperative small animal fatalities. Vet Anaesth Analg. 2008 Sep;35(5):365-73
4. Calasans-Maia MD, Monteiro ML, Ascoli FO, Granjeiro JM. The rabbit as an animal model for experimental surgery // Acta Cir Bras.2009 Jul-Aug;24(4):325-8
5. Domestic Rabbits: Diseases and Parasites / N.M. Patton, K.W. Hagen, J.R. Gorham, and R.E. Flatt. Oregon State University, 2008. - 30 р.
6. Flecknell, P.A., Cruz, I.J., Liles, J.H., Whelan, G. Induction of anaesthesia with halothane and isoflurane in the rabbit: a comparison of the use of a face-mask or an anaesthetic chamber // Lab Anim., 1996; 30, 67-74
7. Gillett, C.S. Selected drug dosages and clinical reference data // In The Biology of the Laboratory Rabbit, 2nd edn. (P.J. Manning, D.H. Ringler, C.E. Newcomer, eds), Academic Press, 1994; pp 468-472
8. Grint NJ, Murison PJ. A comparison of ketamine-midazolam and ketamine-medetomidine combinations for induction of anaesthesia in rabbits // Vet Anaesth Analg. 2008 Mar;35(2):113-21
9. Inglis S, Strunk A. Rabbit anesthesia // Lab Anim (NY), 2009 Mar;38(3):84-5
10. Keeble E., Meredith A. Rabbit Medicine & Surgery (Self-assessment Colour Review) // Manson Publishing, Jan 2006, 192 р.
11. Lichtenberger M, Ko J. Anesthesia and analgesia for small mammals and birds // Vet Clin North Am Exot Anim Pract. 2007 May;10(2):293-315
12. Mason D.E. Anesthesia, analgesia, and sedation for small mammals // In Ferrets, Rabbits and Rodents, Clinical Medicine and Surgery. (E.V. Hillyer, K.E. Quesenberry, eds). 1997. - pp 378-391
13. Rabbits: Health, Husbandry and Diseases / V.C.G. Richardson. Blackwell Science Ltd, 2000.- 184 р.
14. Small Animal Clinical Pharmacology / Jill Maddison at al. - Elsevier Limited, 2008. - 589 p.

Дмитрий Тамошкин – главный ветврач ветклиники «Ветус»

При оказании лечебной помощи пушному зверю, необходимо укрепить его в таком положении, чтобы животное не причинило вреда себе, ассистенту и лечащему врачу. Методы фиксации зверя должны обеспечивать оптимальный доступ к по­лю операции.

Зверя ловят при помощи специальных ловушек, щипцов, сач­ков или утепленных рукавиц, дающих возможность обслуживаю­щему персоналу уберечь себя от зубов и когтей зверя (рисунки 1, 2).

Пойманному и надежно удерживаемому в руках человека зверю фиксируют рот мягкой марлевой повязкой, которую накладывают вокруг челюстей и завязывают на спинке носа. У соболей и но­рок, лицевая часть которых более короткая и коническая, такую тесьму укрепляют предварительно вложенной поперек рта за клыками круглой гладкой палочкой; зажатая между челюстями па­лочка удерживается верхними и нижними клыками и одновремен­но сама фиксирует наложенную сзади нее тесьму.

Для фиксации норок при взятии проб крови для исследова­ния, проведении массовых профилактических вакцинаций, а также для других целей исполь­зуют сетчатую цилиндрическую ловушку с отверстием с одного края. Сетчатая ловушка для самцов размером 35 × 9 см, для са­мок 30 × 7 см (рисунок 3).

Ловушку подставляют к лазу домика, за­гоняют в нее норку так, чтобы голова ее была в глухом конце ловушки, а к задним конечностям животного был доступ.

В зависимости от места операции животное помещают на обыкновенный стол в спинном, брюшном, боковом или удерживают в стоячем, положении.

Иногда звери, на которых наложены фиксирующие повязки, сильно беспокоятся. Таким животным предварительно следует сделать наркоз или ввести промедол , амина­зин или другие анальгезирующие или транквилизирующие средства.

У щенков лисиц и песцов можно открывать рот, надавливая двумя пальцами руки (большим и средним) через щеки на межчелюстные пространства губ вблизи че­люстного сустава. При этом ладонь руки кладут на лоб животного, а пальцами охватывают его череп. Достаточно легко нажать пальцами на межчелюстное пространство, и щенки открывают рот. При более длительных манипуляциях в ротовой полости и при зондировании желудка, рот фиксируют в открытом положении с помощью деревянного зевника для мелких животных И.Г. Шарабрина с круглым отверстием в центре или с помощью резиновой пробки, укрепленной на металлическом стержне.

Анестезия (местное обезболивание)

(Anaesthesia s. analgesia)

Для местного обезболива­ния применяют новокаин в виде 0,25…2%-х растворов. Доза для соболей, норок, лисиц и песцов – 0,04 г на кг массы.

Новокаин применяют: для поверхностного обезболивания конъюнктивы, слизистых оболочек носа, рта, прямой кишки в форме более концентрированных водных растворов и мазей; для инфильтрационной анестезии при ампутации конечностей, хирургических вмешательствах в глубоких тканях и при полостных операциях (в сочетании с аналгезирующими и нейроплегическими средства­ми в форме водных (0,25…0,5%-х) растворов; для периневральной проводниковой анестезии в более концентрирован­ных (1...2%-х) водных растворах; у лисиц и песцов для спинномозговой (люмбарной) анестезии в 0,5…1%-х растворах (доза 0,01 г новокаина на кг массы).

Иглу вводят по медиальной линии перпендикулярно меж­ду остистыми отростками двух последних поясничных позвонков. Соблюдается строгая асептика. В зависимости от количества вве­денного раствора и распределения его по спинномозговому кана­лу область обезболивания может распространиться до переднего пояса конечностей.

Растворы новокаина применяют также с целью проведения патогенетической терапии (по методу А.В. Вишневского), при плохо заживающих язвенных процессах, флегмонах, маститах, отеках, заболеваниях органов грудной, брюшной и тазовой полостей. В зави­симости от способа применения различают короткую блокаду (местную) и отдаленную. При короткой блокаде раствор ново­каина (0,25…0,5%-й) с добавлением бензилпенициллина и стрептомицина инъецируют вокруг очага поражения или вводят под него, при этом ткани инфильтрируют обильно. В некоторых случаях блокаду повторяют через 3...4 дня. К отдаленным блокадам, используемым в звероводческой практике, относятся: а) шей­ная вагосимптоматическая блокада – введение анальгезирующего раствора в область расположения блуждающего и симптоматиче­ского нервов на шее и б) поясничная (паранефральная) новокаиновая блокада – введение раствора новокаина с добавлением стрептомицина в область почечного нервного сплетения. Последняя широко используется при заболеваниях органов брюшной и тазовой по­лостей.

При поясничной блокаде зверя фиксируют два человека, при­чем один держит за передние конечности и голову, а второй – за задние и одновременно поддерживает животное одной рукой под живот для предупреждения резких движений. Иглу вводят у лисиц и песцов с левой стороны за поперечнореберным отростком второго поясничного позвонка (между поперечными отростками второго и третьего по­ясничных позвонков); а справа за поперечнореберным отростком первого поясничного позвонка (между первым и вторым позвон­ками), отступя от средней линии (остистых отростков) поясницы на 2…2,5 см. У соболей и норок иглу вводят на уровне второго поясничного позвонка с левой стороны и на уровне первого позвон­ка с правой стороны, отступя от средней линии поясницы на 1…1,5 см. Почки у пушных зверей можно ощутить путем пальпации через брюшную стенку, что может служить ориентиром для определения места введения иглы. В указанном месте иглу вводят в мягкие ткани до соприкосновения ее с поперечным отростком, а затем смещают ее в ту или другую сторону, чтобы она прошла между указанными выше поперечными отростками, и погружают на глу­бину 0,5…0,8 см у лисиц и песцов и на 0,3…0,5 см у соболей и норок, после чего вводят раствор.

Для предупреждения осложнения инфекцией, в 0,25…0,3%-й раствор новока­ина добавляют стрептомицин в небольших количествах. Доза раствора новока­ина на взрослую ли­сицу или песца – 10…20 мл, на взрослую норку или соболя – 5…7 мл при одностороннем введении; при двустороннем применении эту дозу делят пополам. В случае необходимости блокаду повторяют через 4...5 дней.

Наркоз (Narcosis)

При фиксации и лечении больных зверей нередко возникает необходимость обезболивания или наркоза.

В звероводческой практике используют три вида обезболива­ния: общий наркоз, местную или локальную , и спинномозговую анестезию . Последний вид обез­боливания применяют реже.

В зависимости от сложности опе­рации, состояния, вида и возра­ста зверя применяют наркотиче­ские, анальгезирующие, транкви­лизирующие средства, или соче­тание их и местное обезболива­ние.

Обезболивание достигается посредством инъекции 0,5%-го раствора новокаина.

Наркоз применяют: в фор­ме ингаляции, через рот или прямую кишку, слизистые оболочки пищеварительного тракта, в форме внутривен­ных вливаний, внутрибрюшинно или внутримышечно.

Общий наркоз применяют в основном при полостных операциях. В последние годы в практику звероводческих хозяйств успешно внедрены нейроплегические средства, в частности: хлороформ , эфир медицинский , хлоралгидрат и производные барбитуровой кислоты – амитал (барбамил), этаминал (нембутал) , гексенал , тиопентал натрия , аминазин или мепазин . Каждое средство можно использовать как отдельно, так и в определенной смеси или для комбинационного наркоза.

Для внутривенного глубокого хирургического наркоза пушных зверей пригод­ны лишь барбитураты кратковременного действия (тиопентал , гексенал , амитал , этаминал ).

Аминазин и мепазин расслабляют скелетную мускулатуру, хорошо уменьшают болезненность, обладают успокаивающим действием. При повышении дозы препарата наступает сон. Ориентировочно дозы для лисиц и песцов составляют (внутримышечно или подкожно) 0,05…0,075 г (2...3 мл 2,5%-го раствора) и более. В случае неэффективности, доза препарата во время операции увеличивается до прекращения сокращений мышц брюшной стенки (отсутствие реакции на болевой раздражитель). Доза аминазина для норок, хорьков и соболей – в 2...3 раза меньше.

В последнее время у зверей всех видов применяют в сочета­нии анальгезирующие (промедол , морфин , омнопон ) или транкви­лизирующие средства (аминазин , мепазин – производные фенотиазина) с местноанестезирующими веществами (новокаин , дикаин ).

Наркоз лисиц и песцов . Наиболее эффективными средствами для наркоза лисиц и песцов следует считать хлороформно-эфирную смесь , хлоралгидрат в чистом виде или в виде комбинаций с нембуталом или амиталом , нембутал , амитал , тиопентал натрия и гексенал в чистом виде. Хлороформ и эфир употребляют для нар­коза лисиц различного возраста и массы в соотношении 1:1 в дозе от 15 до 30 мл. Смесь вводят животному с помощью ингаляционной маски. При использовании метода ингаляции следует строго следить за со­стоянием зверя, его пульсом и дыханием. Сон у лисиц обычно на­ступает после предварительного периода возбуждения, длящегося не более 5…10 мин. Ингаляционный наркоз может вызвать пара­лич дыхательного центра (в период наркоза). В посленаркозный период иногда возникают отек легких и пневмония.

При остановке дыхания применяют искусственное дыхание, под кожу (а лучше внутривенно) вводят лобелин, возбуждающий ды­хательный центр, в дозе 0,25 мл 1%-го раствора, или кордиамин (коразол ), возбуждающий сосудодвигательный центр, в дозе 0,25 мл 0,5%-го раствора взрослой лисице.

Посленаркозные осложнения (отек легких и пневмонию) лечат симптоматическими средствами.

Хлоралгидрат вводят лисицам и песцам в прямую кишку в виде 10%-го водного раствора, предварительно добавив в него 2% крахмала . Раствор вводят шприцем с резиновой канюлей длиной 15 см или резиновой спринцовкой из расчета 0,3…0,5 г сухого вещества на кг массы животного. Перед введени­ем раствора прямую кишку освобождают от каловых масс. Наркоз наступает через 15…20 мин и длится до 2...2½ ч.

Лучшие результаты получены от метода, при котором использу­ют этаминал (нембутал ) или амитал (барбамил ) в комбина­ции с хлоралгидратом . Для этого за 1 ч до операции лисице или песцу вводят через рот корнцангом желатиновую капсулу, содержащую амитал или этаминал , из расчета 0,05...0,06 г амитала или 0,05...0,06 г этаминала на кг массы зверя. Эти средства в указанных дозах вызывают у зверей неполный нар­коз (базисный). Затем перед операцией зверю вводят в прямую кишку 10%-й водный раствор хлоралгидрата в количестве 6…15 мл, в зависимости от возраста и массы животного (0,2...0,3 г сухого хлоралгидрата на кг массы). Этот метод обеспечивает наркоз на 2...3 ч. Он почти не дает осложнений и заслуживает внимания при внутриполостных операциях.

Амитал и этаминал , применяемые для наркоза каждый отдель­но, вводят через рот в виде порошка, заключенного в желатино­вые капсулы, из расчета 0,07...0,08 г на кг массы животного. Эти же препараты в виде натриевых солей можно применять внутримышечно (в бедро) и внутривенно (v. saphena ) в виде 5…2,5%-х асептически приготовленных свежих водных растворов в дозе 1,5…2 мл внутримышечно или внутривен­но – до 1,5 мл 5%-го раствора на кг массы зверя.

Гексенал лисицам и песцам вводят внутривенно в виде 5%-го водного раствора в дозе 0,04...0,05 г, либо через прямую кишку в дозе 0,075 г сухого веще­ства на кг массы зверя.

Тиопентал применяют только внутривенно в 2,5%-м растворе из расчета 1 мл раствора на кг массы, но не более 0,25 г сухого ве­щества каждому крупному зверю – лисице и песцу. Подкожно и внутримышечно тиопентал не применяют, так как он вызывает некроз кожи.

Внутривенно растворы гексенала , амитала , этаминала и тиопентала необходимо вводить очень медленно, не более 1...2 мл в 1 мин, так как быстрое введение может вызвать оста­новку дыхания и нарушение кровообращения (явления коллапса). При явлениях коллапса рекомендуется внутривенно или внутри­мышечно ввести кордиамин (коразол ), лобелин , кофеин ; внутри­венно – 40%-й раствор глюкозы ; подкожно – камфорное масло .

Наркоз соболей и норок . При использовании средств для наркоза соболей необходимо быть весьма осторожным в выборе препаратов, дозировки и способа введения вследствие видовой осо­бенности этих пушных зверей – их повышенной нервной возбуди­мости.

Допустимы к применению морфин в комбинации с атропином , хлоралгидрат , тиопентал и амитал . Морфин применяют в виде 2…4%-х водных растворов под­кожно в разовой дозе соболю 0,01 г на кг мас­сы. Для снижения его токсического действия обязательно добав­ляют атропин (1%-й раствор в дозе 0,002 г на кг массы зверя). Введенные препараты вызывают глубокий продолжительный сон.

Хлоралгидрат вводят в прямую кишку при помощи спринцовки или шприца с резиновой канюлей в виде 10%-го раствора на 2%-й крахмальной слизи (0,5…0,7 г, слабым животным не выше 0,5 г, на кг массы).

Амитал задают животному внутрь в виде порошка в дозе 0,07…0,1 г на кг массы. Порошок задают осторожно, чтобы не вызвать аспирационного бронхита или пневмонии.

Менее опасно вводить натриевую соль амитала в виде 5%-го водного раствора внутримышечно в бедро из расчета 1,5…2 мл на кг массы зверя. Этот метод наркоза у соболей наиболее эффективен.

Тиопентал применяют в форме 2,5%-го раствора внутри­венно (v. saphena ) в дозе 1…1,5 мл раствора на кг массы. Вво­дят осторожно и медленно. Если наркоз не наступит, рекоменду­ется ввести дополнительно 1,25%-й раствор тиопентала до 1 мл на кг массы зверя с теми же предосторожностями. При под­кожном введении тиопентала возникает отек подкожной клетчат­ки с последующим некрозом кожи.

Для наркоза норкам применяют амитал или этаминал из расчета: через рот в порошке – 0,05…0,065 г; внутримышечно в виде 5%-го водного раствора натриевых солей – 1…1,5 мл на кг массы.

Растворы тиопентала и гексенала вводят и в брюшную полость. Для этого используют 5%-й раствор гексенала из расчета 0,8…1 мл на кг массы зверя; 2,5%-й раствор тио­пентал натрия – 0,8…1 мл на кг массы животного. Перед введением препаратов для наркоза необходимо путем легкого массажа мочевого пузыря удалить из него мочу. Иглу вводят в подвздошную область, животное фиксируют приподнятой задней частью тела.

При хирургических вмешательствах у пушных зверей применя­ют анальгезирующие средства – промедол внутримышечно или подкожно в виде 1...2%-го раствора из расчета соболю и норке – 0,002...0,003 г, лисице и песцу – 0,005…0,01 г на зверя в сочетании с местноанестезирующими веществами (0,5...1%-й раствор новокаина ) или нейроплегические средства – аминазин и мепазин в 0,5…2,5%-м растворе в сочетании с 0,5…1%-м раствором новокаина .

Аминазин и мепазин вводят внутримышечно, реже внутривенно в дозе 0,005...0,075 г на голову взрослому соболю или норке и 0,0125…0,02 г – на голову взрослой лисице или песцу. При этом необходимое количество аминазина или мепазина разводят в 1...2 мл 0,25…0,5%-го раствора новокаина; для внутривенного введения эти препараты применяют в минимальных дозах и разводят в 5…10 мл 20…40%-го раствора глюкозы или изотонического раство­ра хлористого натрия.

Многие владельцы переживают, как их любимец перенесет оперативное вмешательство, для которого необходим наркоз.

Риск анестезии у кроликов – ключевые факторы

Имеется много факторов, которые могут повлиять на риск анестезии у кроликов. Среди них особенно выделяются

• стрессы,
• ряд предшествующих заболеваний,
• гипоксия.

Благодаря клиническому осмотру перед процедурой можно установить текущее состояние животного. Взвешивание поможет рассчитать дозировку препаратов, вводимых зверькам. Благодаря современному оборудованию, качественному и точному расчету дозы и наблюдению удается максимально безопасно.

Предварительный клинический осмотр

Благодаря клиническому осмотру, удается установить общее состояние животного перед анестезией. Особи, находящие в шоке, гипотензии или дегитратированные, требуют пристального внимания – специалист вводит таким кроликам питательную жидкость внутривенным или внутрикостным методом.

У кроликов не возникает рвотного рефлекса, и в результате, можно производить анестезию практически . Уже в течение 1-2 часов в их ротовой полости не останется частиц еды, а в желудке будет достаточно места.

После анестезии животному требуется постоянный приток кислорода в легкие. Благодаря оксигенации, можно существенно снизить риски проявления гипоксии. Осуществить подачу воздуха можно путем кислородной маски, с помощью назальных или эндотрахеальных трубок и через канал, вставленный в глотку.

Благодаря эндотрахеальной интубации, у животных существенно снижается риск длительной задержки дыхания, и можно вводить кислород в легкие. Это позволит избежать смертности. Также, данная процедура, в случае осложнений, позволит произвести искусственную легочную вентиляцию.

Интубирование животных

Чтобы сделать интубирование кролику, важно учитывать анатомические особенности их трахеи, полости рта и носоглотки. учитывают малый объем легких и делают процедуру так, чтобы избежать гипоксии у зверька. В сравнении с брюшной областью, легкие этих животных очень маленькие – их объем равен не более 5-6 мл/кг. Благодаря движению диафрагмы, они дышат – легкие работают не за счет мышц межреберной части организма. В специалист следит, чтобы органы брюшка животного не давили на диафрагму.

Пульсоксиметр

В качестве элемента анестезиологического оборудования применяют пульсоксиметр. Идеальное место для его крепления – язык кролика. Но данные действия будут невозможными, если мордочка будет под кислородной маской. Четкий сигнал будет поступать с основания хвоста или паховых складок, но для этого потребуется выщипать шерсть. Также в качестве дополнительного оборудования используется ректальный зонд.

-- [ Страница 2 ] --

В крови определяли количество эритроцитов, содержание в них гемоглобина, СОЭ, цветной показатель, количество лейкоцитов и изучали лейкограмму по общепринятым в гематологии методикам.

Кровь для получения сыворотки брали из яремной вены в сухие пробирки до введения препаратов, через 24 часа, 1, 3, 7 и 14 суток после проведения опыта.

В сыворотке крови определяли: количество глюкозы, общего белка, активность АсАТ и АлАТ, концентрацию общего билирубина, мочевины, креатинина с помощью биохимического анализатора - полуавтомата BioChem SA.

Электрокардиографические исследования проводили при помощи электрокардиографа ЭК 14 Т, запись осуществляли во втором отведении; оценку проводили общепринятым в кардиологии методом.

Орхидэктомию у кролей поводили закрытым способом.

Ультразвуковые исследования органов брюшной полости кроликов проводили с помощью портативного ветеринарного ультразвукового сканера PU 2200 Vet до введения препаратов, через 10 минут после введения 2% раствора ксилазина гидрохлорида, золетила, а также их комбинации через 10, 30, 60, 90, 120, 150 и 180 минут по разработанной нами методике.

Морфологическую картину органов брюшной полости оценивали при вскрытии кроликов на разных сроках исследования: без применения рометара и золетила (контрольная группа), через 30 минут после введения указанных препаратов, через 1 сутки после оперативного вмешательства и через 7 суток после общего обезболивания.

Для гистологических исследований кусочки органов фиксировали в 10% нейтральном формалине, гистосрезы готовили на санном микротоме толщиной 5-7 мкм, окрашивали гематоксилином и эозином.

Статистическая обработка цифрового материала результатов исследования была осуществлена методом вариационной статистики с использованием пакета прикладных программ Microsoft Excel XP, выведением M, m, коэффициента достоверности Р с учетом критерия Стьюдента.

Степень достоверности показателей относительно таковых до опыта, отмеченных * были меньше 0,05.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Подбор препаратов и оценка степени общей

анестезии у кроликов

Проведенные исследования позволили определить наиболее оптимальный вариант общей анестезии для кроликов. Во всех случаях оказалась оправданной премедикация 2% раствором ксилазина гидрохлорида.

Введение рометара сопровождалось изменениями, характерными для препаратов данной группы. Через 5 - 10 минут после введения препарата животные опускали голову, наблюдались седация и снижение болевой чувствительности, однако, на некоторые манипуляции, связанные с фиксацией в боковом положении, кролики оказывали достаточно активное сопротивление.

Внутривенное струйное введение 1% водной эмульсии пропофола вызывало хорошо выраженную релаксацию мышц конечностей, но болевая чувствительность сохранялась, что исключало возможность проведения хирургических вмешательств.

Ингаляция эфиром вызывала отсутствие рефлексов и болевой чувствительности в течение 10 минут, тонуса мышц челюстей и век – 15 минут. Через 30 минут кролики пытались вставать, а через 40 минут могли самостоятельно изменять положение тела в пространстве.

Применение золетила-50 в качестве мононаркоза обеспечило мгновенную релаксацию мышц и отсутствие болевой чувствительности в течение 5 минут. Через 30 минут восстанавливалась двигательная активность кроликов, а через 1 час они могли самостоятельно передвигаться.

На фоне премедикации рометаром введение золетила – 50 как внутримышечно, так и внутривенно позволяло достичь хирургической стадии наркоза. Через 25-30 минут после внутримышечного и 30-35 минут после внутривенного введения восстанавливалась болевая чувствительность, через 45 – 60 минут кролики пытались вставать, а самостоятельно передвигаться могли через 90 минут.

3.2. Влияние препаратов для обезболивания и их комбинаций на клинический статус, морфологические, биохимические показатели крови и сердечную деятельность кроликов

3.2.1. Влияние рометара и эфира на организм кроликов

Премедикация рометаром вызывала незначительное повышение температуры тела кроликов первой подгруппы этой группы, которое сменилось понижением значения этого показателя после применения эфира и сохранялось в течение трех часов.

Через 10 минут после введения рометара отмечалось урежение пульса и частоты дыхательных движений, которые через 10 минут после применения эфира для наркоза сменялись учащением, но уже через 30 минут после -отмечалась тенденция к снижению, а через сутки значения частоты сердечных сокращений и дыхательных движений приближались к первоначальным.

В морфологическом составе крови кроликов этой подгруппы в течение часа отмечалась тенденция к снижению числа эритроцитов и содержания в них гемоглобина. После премедикации рометаром незначительно увеличивалось содержание лейкоцитов, которое сменялось уменьшением их числа после применения эфира. Через 3 часа после обезболивания регистрировали резкий подъем количества лейкоцитов, и только на седьмые сутки этот показатель восстанавливался до исходного уровня (рис. 1, 2).

Изменения в лейкограммах касались в основном количества сегментоядерных, палочкоядерных форм нейтрофилов и лимфоцитов.

Через 10 минут после внутримышечного введения рометара появилась тенденция к повышению процента сегментоядерных нейтрофилов, которая сохранялась в течение трех часов и после ингаляции эфира. Изменения количества лимфоцитов были подобны изменениям сегментоядерных нейтрофилов, но с противоположным знаком (рис. 3, 4).

В биохимическом составе сыворотки крови отмечалось снижение содержания глюкозы, активности АлАТ и АсАТ, повышение концентрации общего билирубина, мочевины, количества креатинина и общего белка. Первоначального уровня практически все показатели достигали через 14 суток (таб.2).

После введения рометара отмечалось урежение частоты сердечных сокращений, удлинение как систолического, так и диастолического периодов и значительное снижение амплитуды зубца R. Ингаляция эфира приводила к снижению продолжительности интервалов Q-T и R-R, деформации зубца Р, предшествовавшему не каждому комплексу QRS, увеличению амплитуды зубца Т, который становился отрицательным, снижению амплитуды зубца R.

Через 24 часа показатели электрокардиограмм практически не отличались от первоначальных.

3.2.2. Влияние золетила на организм кроликов

При изучении показателей, характеризующих клинический статус подопытных кроликов второй подгруппы первой группы, установлено понижение температуры тела, урежение сердечных сокращений и дыхательных движений, прослеживающихся в течение 3 часов после введения препарата и достигающих первоначального уровня через 1 сутки.

После внутривенного введения золетила наблюдалось снижение числа эритроцитов, содержания в них гемоглобина. Через сутки эти показатели практически не отличались от данных, полученных до введения препарата. Указанные изменения сопровождались увеличением числа лейкоцитов, сохранявшимся в течение трех суток (рис. 1, 2).

В лейкограммах отмечалось увеличение процентного содержания палочкоядерных нейтрофилов уже через час после введения животных в наркоз и на этом уровне сохранялось в течение трех суток. Через час от начала обезболивания увеличивалось число сегментоядерных нейтрофилов, что, как и у животных предыдущей подгруппы, приводило к снижению числа лимфоцитов и, наоборот, в те же сроки исследования (рис. 3, 4).

В течение трех суток после внутривенного введения золетила наблюдалось снижение уровня глюкозы и увеличение количества общего белка в сыворотке крови.

Через 10 минут после введения золетила отмечалось незначительное снижение частоты сердечных сокращений, снижение амплитуды зубца S в некоторых циклах. Через час в отдельных циклах отмечалась экстрасистолия, увеличение амплитуды зубцов Р и R, а зубец Т становился отрицательным. Увеличивалась продолжительность интервалов R-R и Q-T.

Через сутки показатели электрокардиограмм приближались к первоначальным.

3.2.3. Влияние рометара и золетила на организм кроликов

После введения золетила на фоне премедикации рометаром у кроликов начиналось снижение температуры тела, и через три часа достигало минимального уровня (35,2±0,36С).

Наблюдавшееся после введения рометара урежение пульса, после введения золетила сменялось кратковременной нормализацией, после чего вновь наблюдалась брадикардия. Описанные изменения сопровождались урежением дыхания. Через сутки значения этих показателей практически не отличались от доопытных.

Тенденция к снижению числа эритроцитов и содержания в них гемоглобина прослеживалась в течение часа после введения золетила и сменялась быстрым восстановлением количества эритроцитов, которое через три часа существенно не отличалось от данных, полученных до введения рометара и золетила (рис. 1).

В картине белой крови изменения были аналогичны таковым кроликов первой подгруппы этой группы, но с меньшей степенью выраженности.

Количество лейкоцитов через 10 минут после премедикации увеличивалось, а после введения золетила-50 – снижалось в течение 30 минут. Через три часа отмечалось увеличение содержания лейкоцитов, сменившееся снижением и достигающим на третьи сутки минимального значения, затем отмечалась тенденция к его повышению (рис. 2).

Изменения в лейкограммах были аналогичными таковым животных второй подгруппы, но выражены в меньшей степени. Через 10 минут после применения золетила-50 в крови появлялись юные нейтрофилы, которые в другие сроки исследования не обнаруживались в периферической крови кроликов этой подгруппы. Процентное содержание палочкоядерных форм нейтрофилов через 10 минут после премедикации снижалось. Через 10 минут после достижения хирургической стадии наркоза отмечалось повышение процента палочкоядерных нейтрофилов, которое продолжалось в течение 24 часов и только на седьмые сутки их число приближалось к исходному.

Количество сегментоядерных нейтрофилов через 10 минут после введения

Рисунок 1 - Изменения количества эритроцитов у Рисунок 2 - Изменения количества лейкоцитов у

кроликов второй группы, 1012/л кроликов второй группы, 109/л

Рисунок 3 - Изменения процентного содержания Рисунок 4 - Изменения процентного содержания

сегментоядерных нейтрофилов у кроликов лимфоцитов у кроликов второй группы

второй группы

Таблица 2 - Изменения биохимических показателей сыворотки крови кроликов